新闻动态 News

您现在所在的位置: 首页» 新闻动态 News

Nat Commun|魏文胜团队报道非脱氨酶依赖的嘧啶碱基编辑器TBE

2024-08-02

DNA碱基编辑工具的进步为疾病治疗带来了巨大的希望,可修复由单核苷酸多态性(SNPs)【1】引起的单基因遗传疾病。目前,胞嘧啶碱基编辑器和腺嘌呤碱基编辑器主要依靠脱氨酶将胞嘧啶 (C) 或腺嘌呤 (A) 转化为尿嘧啶 (U) 或肌苷 (I),脱氨后的U和I会分别被识别为胸腺嘧啶 (T) 和鸟嘌呤 (G),从而促进C-to-T和A-to-G碱基变化【2-4】。在此基础上,进一步引入DNA糖基化酶切割中间产物U或I,产生无尿嘧啶/无嘧啶位点(AP位点),可以实现碱基的颠换,包括C-to-G转换的CGBE【5、6】和A-to-T/C转换的AYBE【7、8】。但以上碱基编辑工具均依赖脱氨酶,限制了它们编辑T和G的能力,并且由于脱氨酶的过表达会引起一定的脱靶效应。

2024年7月30日,北京大学魏文胜课题组在Nature Communications杂志在线发表题为 “Programmable DNA pyrimidine base editing via engineered uracil-DNA glycosylase”的研究论文,报道了一种名为TBE (Thymine base editor) 的不依赖脱氨酶的DNA碱基编辑工具。与现存的其他胸腺嘧啶编辑工具相比,TBE表现出更高的编辑效率、更小的细胞毒性和更低的脱靶现象。

1: 不依赖于脱氨酶的碱基编辑器

研究人员关注到人源化尿嘧啶DNA-糖基化酶 (hUNG) 的两个突变体可以在体外实现对胞嘧啶和胸腺嘧啶的直接切割【10】。因此,通过将hUNG突变体与Cas9蛋白结合,sgRNA靶向编辑位点可以在体内实现对DNA序列中的CT的直接编辑 (1),其中在报告系统上编辑C的效率可达到30%,与现存的CGBE编辑效率类似,但针对ThUNG突变体编辑效率较低。

为了进一步提高胸腺嘧啶的编辑效率,研究人员通过对UNG结构理性设计、同源蛋白检索、定向进化筛选的策略找到了来自耐辐射奇球菌 (Deinococcus radiodurans) 的尿嘧啶DNA-糖基化酶 (DrUNG) 突变体可以在多个人类基因组位点上实现高效的胸腺嘧啶编辑 (2),编辑结果显示平均T-to-C, T-to-GT-to-A的比例为52%, 30%18%。通过优化连接氨基酸、引入具有合成倾向性的DNA聚合酶,还可以进一步提高编辑效率与编辑纯度。全面评估显示,TBE在基因组或转录组水平上都不会导致严重的脱靶编辑,这表明其具有高度的编辑特异性。

2: TBEs在人类基因组多个内源位点实现高效的编辑

近期,多个团队也报道了基于人源化糖基化酶的胸腺嘧啶碱基编辑器【11-12】。通过比较32个内源位点编辑结果,研究人员发现与基于人源的胸腺嘧啶碱基编辑器相比,TBE展现出更高的编辑效率。此外,细胞毒性实验也表明TBE具有更小的细胞毒性。

最后,通过将DrUNG突变体的mRNA与nickase SpCas9融合蛋白和sgRNA共转染到原代成纤维细胞中的α-L-艾杜糖醛酸酶缺陷细胞中,可以观察到该酶活性的恢复,证明了TBEs在相关疾病治疗方面的潜在应用前景。

北京大学/昌平实验室魏文胜课题组博士后伊宗裔、博士后张小雪、博士研究生魏晓旭、本科生李佳怡(2024级研究生新生)为论文的共同第一作者。本研究获得了国家自然科学基金,昌平实验室,北大-清华生命科学中心及中国博士后科学基金资助。

文章链接:https://www.nature.com/articles/s41467-024-50012-w

1. Porto, E.M., Komor, A.C., Slaymaker, I.M. & Yeo, G.W. Base editing: advances and therapeutic opportunities. Nat Rev Drug Discov 19, 839-859 (2020).

2. Anzalone, A.V., Koblan, L.W. & Liu, D.R. Genome editing with CRISPR-Cas nucleases, base editors, transposases and prime editors. Nat Biotechnol 38, 824-844 (2020).

3. Gaudelli, N.M. et al. Programmable base editing of A*T to G*C in genomic DNA without DNA cleavage. Nature 551, 464-471 (2017).

4. Komor, A.C., Kim, Y.B., Packer, M.S., Zuris, J.A. & Liu, D.R. Programmable editing of a target base in genomic DNA without double-stranded DNA cleavage. Nature 533, 420-424 (2016).

5. Zhao, D. et al. Glycosylase base editors enable C-to-A and C-to-G base changes. Nat Biotechnol 39, 35-40 (2021).

6. Kurt, I.C. et al. CRISPR C-to-G base editors for inducing targeted DNA transversions in human cells. Nat Biotechnol 39, 41-46 (2021).

7. Tong, H. et al. Programmable A-to-Y base editing by fusing an adenine base editor with an N-methylpurine DNA glycosylase. Nat Biotechnol 41, 1080-1084 (2023)

8. Chen, L. et al. Adenine transversion editors enable precise, efficient A*T-to-C*G base editing in mammalian cells and embryos. Nat Biotechnol (2023)

9. Tong, H. et al. Programmable deaminase-free base editors for G-to-Y conversion by engineered glycosylase. Natl Sci Rev 10, nwad143 (2023).

10. Parikh, S.S., Mol, C.D., Slupphaug, G., Bharati, S., Krokan, H.E. & Tainer, J.A. Base excision repair initiation revealed by crystal structures and binding kinetics of human uracil-DNA glycosylase with DNA. EMBO J 17, 5214-5226 (1998).

11. Ye, L. et al. Glycosylase-based base editors for efficient T-to-G and C-to-G editing in mammalian cells. Nat Biotechnol (2024).

12. He, Y. et al. Protein language models-assisted optimization of a uracil-N-glycosylase variant enables programmable T-to-G and T-to-C base editing. Mol Cell (2024).